Консервация органов и тканей

СПОСОБ КОНСЕРВИРОВАНИЯ АНАТОМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ И ИХ ХРАНЕНИЕ В ПАРАХ ФОРМАЛИНА ДЛЯ МУЗЕЙНЫХ ЦЕЛЕЙ

Свежий трупный материал промывают под проточной водой, вымывая содержимое сосудов и полостных органов (кишечник, желудок). После промывки под струей воды, материал погружают в емкость с холодной водой, желательно поставить емкость под проточную воду либо менять воду 3-4 раза в сутки. Материал промывают в течение 24-48 часов в зависимости от его размеров. Тщательно промывают кишечник, желудок, полости сердца и крупные сосуды. После чего материал погружают на 1-6 месяцев в 3% раствор формалина для предварительной фиксации.

Зафиксированный материал перед препарирования промывают под проточной водой в течении 12-24 часов. После окончания препарирования, препарат нашивают на стекло и погружают в 20% раствор формалина с добавлением глицерина, количество которого должно быть не менее 30%, лучше 50%. В данном растворе препарат находится в течение 1-6 месяцев, в зависимости от объема препарата. После пропитывания препарата раствором формалина с глицерином его вынимают и просушивают в вертикальном положении в течении 1 часа. После чего на препарат наклеивают нумерацию.

Номера наклеивают 10% раствором желатина по часовой стрелке сверху вниз, приклеенный номерок желательно полностью покрывать желатином. Затем препарат выдерживают на воздухе 15-20 минут. После чего препарат погружают в 40% раствор формалина на 5-10 минут для фиксации желатина. Вынув препарат из 40% раствора формалина, ему дают стечь и покрывают 70% раствором глицерина. На этом изготовление препарата заканчивается.

Для хранения и экспонирования таких препаратов в музее, предлагается такой способ.

На дно анатомической посуды укладывают слой ваты, обвернутой в фильтровальную или промокательную бумагу. Толщина слоя может быть от 1 до 5 см, в зависимости от объема посуды и размера препарата.

На подготовленный слой ваты наливают 40% раствор формалина, до уровня слоя ваты (так чтобы формалин не выступал на поверхность слоя). После чего в банку помещают предварительно препарат, приготовленный указанным ранее способом.

Для того, чтобы стенки банки не запотевали их изнутри смазывают тонким слоем вазелинового масла. Банку с препаратом закрывают герметично, для чего используют клей «Контактол» (для склеивания стекла). Его наносят тонкой колбаской на верхний край банки и сверху кладут стекло, вырезанное по форме и размеру соответствующему данной посуде. Стекло слегка придавливают к банке. Можно положить небольшой груз. В таком положении клею дают высохнуть в течение суток.

Таким образом, применяя этот метод хранения и экспонирования препаратов в музее, мы имеем ряд преимуществ: малый расход формалина, значительное уменьшение веса банки с препаратом, нет искажения объема препарата. Препараты, сохраняющиеся таким способом, не теряют своей наглядности в течение неопределенно долгого срока.

Источник

ТРАНСПЛАНТАЦИЯ органов и тканей

ТРАНСПЛАНТАЦИЯ органов и тканей (лат. transplantare пересаживать; син. пересадка органов и тканей) — замещение поврежденных или отсутствующих тканей или органов собственными тканями либо тканями и органами, взятыми из другого организма.

Проблемы Трансплантации изучает трансплантология (см.), разрабатывающая также методы консервирования органов и тканей (см.).

В клинической практике наибольшее распространение получила пересадка тканей и частей органов, напр, мышц, сухожилий, кожи, костной, хрящевой и жировой тканей, сосудов, нервов, роговицы глаза, костного мозга (см. Трансплантация костного мозга) и др. Особым видом Трансплантации является переливание крови (см.). Из числа трансплантируемых органов чаще осуществляют пересадку почки (см.). Благоприятные результаты получены при Т. эндокринных желез, в частности яичников (см.), яичек (см.), щитовидной железы (см), вилочковой железы (см.). В клин, условиях произведены также Т. легких, сердца, печени (см. Пересадка легкого, Пересадка сердца, Пересадка печени). Т. органов применяют при лечении заболеваний, как правило, в терминальных стадиях, а также больным, потерявшим единственный парный орган, напр, почку в результате травмы или оперативного вмешательства. Т. широко используется также в экспериментальной биологии и медицине. Напр., в экспериментальной онкологии получила распространение Т. опухолевых клеток, так наз. перевиваемых штаммов опухолей (см. Онкология экспериментальная).

В соответствии с классификацией видовых различий трансплантата, предложенной в начале 60-х гг. рядом исследователей, различают аутотрансплантацию (устаревший термин «аутологичная трансплантация») — пересадку собственных органов и тканей организма; изотрансплантацию — пересадку органов или тканей, взятых от организмов генетически полностью идентичных (монозиготные близнецы, сингенная Т.) или в большей степени идентичных (кровные родственники); аллотрансплантацию (устаревший термин «гомотрансплантация») — пересадку органов или тканей от организма того же вида и ксенотрансплантацию (устаревший термин «гетеротрансплантация») — пересадку органов или тканей от организма другого вида. Организм, от к-рого берут органы или ткани для Т., называют донором, а организм, в к-рый осуществляют пересадку органа или ткани, — реципиентом. Участок ткани или орган, используемый для Т., называется трансплантатом (см.). При Т. ткань или орган могут быть помещены в организме реципиента как на место такого же отсутствующего или удаленного органа (ортотопическая Т.), так и в другое, несвойственное ему в организме место (гетеротопическая Т.). Гетеротопическа я Т. иногда носит характер добавочной, когда пересаживаемый орган выполняет роль помощника пораженного собственного органа больного. Так, при гетеротопической Т. печени ее помещают в брюшную полость реципиента вместо удаленной селезенки. При этом собственную, но пораженную патол. процессом печень реципиента сохраняют. Пересадку почки, как правило, осуществляют гетеротопически в левую или правую подвздошные ямки.

Основу для подбора пар донор — реципиент представляют эритроци-тарные антигены системы AB0 (см. Группы крови), резус-фактора (см.) и HLA-система (см. Иммунитет трансплантационный, антигены гистосовместимости). При этом, если по системе AB0 необходима полная совместимость донора и реципиента, то по HLA-системе возможна идентификация лишь наиболее выраженных антигенов.

Развитие совр. методов микрохирургии (см.), сосудистого шва (см.), искусственного кровообращения (см.), шунтирования кровеносных сосудов (см.), восстановительной хирургии (см.), анестезиологии (см.) и реаниматологии (см.) способствует успешному проведению Т. различных тканей и органов. Основным обстоятельством, сдерживающим развитие Т., является биол. несовместимость тканей, проявляющаяся в различные сроки после пересадки в реакции (кризе) отторжения трансплантированного органа (см. Несовместимость иммунологическая). Возможность подавления трансплантационного иммунитета и создания искусственной толерантности к пересаженным органам и тканям была установлена в начале 50-х гг. (см. Иммунитет трансплантационный, Толерантность иммунологическая). На основе полученных при этом данных разработаны методы иммунодепрессивной терапии (см. Иммунотерапия). Среди них основными являются применение иммунодепрессивных веществ (см.) или различных агентов, напр. ионизирующих излучений (см.), подавляющих трансплантационный иммунитет. В результате применения методов иммунодепрессивной терапии наступает временное или постоянное угнетение иммунной системы, к-рое характеризуется, помимо снижения трансплантационного иммунитета, повышением чувствительности к возбудителям инфекций и частоты возникновения злокачественных опухолей (см. Иммунодепрессивные состояния).

Трудности, связанные с преодолением при Т. биол. несовместимости тканей, обусловили разработку моделей искусственных органов (см.), в частности искусственного сердца (см.), искусственной поджелудочной железы (см.), активно осуществляемых в СССР и ряде других стран.

Лопаткин Н. А. и Кучинский И. Н. Лечение острой и хронической почечной недостаточности, М., 1972; Петров Р. В. и Манько В. М. Иммунодепрессоры, М., 1971; Петровский Б. В. и др. Пересадка почки, М. — Варшава, 1969; Снелл Д., Доссэ Ж. и Нэтенсон С, Совместимость тканей, пер. с англ., М. 1979; Трансплантация органов и тканей, под ред. Б. В. Петровского, М., 1966; Шумаков В. И., Гальперин Э. И. и Неклюдова Е. А. Трансплантация печени, М., 1981, библиогр.; Шумаков В. И., Штенгольд Е. Ш, и Онищенко Н. А. Консервация органов, М., 1975; Bach F. Н. а. Gose J. Е. Cellular basis of allograft rejection, Transplant. Proc., v. 13, p. 1063, 1981; Cadaveric renal transplantation, ed., by Y. Iwasaki, Tokyo, 1974; Caine R. Y. Transplant surgery, current status, Brit. J. Surg., v. 67, p. 765, 1980; Clinical histocompatibility testing, ed. by C. B. Curpenter a. W. V. Miller, v. 2, N. Y., a. a., 1978; Degos L. Histocompatibility le prix Nobel de m6decine 1980, Concours m6d., t, 103, p. 2809, 1981; Deutsch E. Brauchen wir das Trans-plantationsgesetz? Chirurg, Bd 51, S. 349, 1980; Piсhlmayr R, Transplan-tationagesetzgebung in chirurgischer Sicht, Chirurg, Bd 51, S. 344, 1980; Transplantation today, v., 1—6, N®Y. — L., 1971 — 1981.

Источник

Методы сохранения органов и техника приготовления музейных препаратов

Сохранение органов и тканей трупов животных преследует различные цели. Органы и ткани сохраняют для уточнения патологоанатомического диагноза и производства судебно-ветеринарной экспертизы (как вещественное доказательство). Из органов и тканей готовят патологоанатомические препараты для проведения ветеринарно-просветительной работы среди работников животноводства, для научных и учебных целей.

Комната, где хранятся препараты, называется патологоанатомическим музеем. Такие музеи есть при крупных кафедрах и научно-исследовательских лабораториях.

В настоящее время для сохранения органов и тканей предложено много методов. Применение того или иного из них зависит от целей предпринимаемого консервирования. По способу изготовления патологоанатомические препараты могут быть влажные и сухие. При любом способе изготовления препаратов стремятся сохранить естественную окраску органов и тканей.

Изготовление влажных препаратов

Наиболее распространен метод сохранения органов и отдельных тканей (частей) трупа животного во влажной среде (жидкости), как более надежный для сохранения естественной окраски.

Изготовление влажных патологоанатомических препаратов слагается из ряда этапов: отбор материала и подготовка его к фиксации; фиксация; восстановление цвета; консервирование (пропитывание глицериновой смесью); монтирование препарата.

Для фиксации, восстановления цвета и консервирования патологоанатомического материала предложено несколько прописей растворов. Из них наибольшее практическое значение имеют следующие.

Раствор I (фиксирующий):

Раствор III (консервирующий):

Раствор I (фиксирующий):

Раствор II (восстанавливающий цвет): спирт 85—90%-ный

Раствор III (консервирующий):

Раствор I (фиксирующий):

Раствор II (восстанавливающий цвет): спирт 85—90%-ный

Раствор III (консервирующий):

Формалин представляет собой 40%-ный водный раствор формальдегида (СН₂О). Это бесцветная или слегка желтоватая жидкость с резким запахом. Хорошо растворима в воде. Обладает сильным бактерицидным действием. Впервые в патологоанатомической практике применен в 1893 г., с тех пор благодаря доступности, дешевизне и способности надежно предохранять органы и ткани от гниения стал одним из наиболее употребительных фиксаторов.

Растворы формалина легко испаряются, и его пары вызывают раздражение слизистых оболочек, что вызывает слезотечение, кашель, чихание (опасен для верхних дыхательных путей). При работе (с патматериалом, фиксированным в формалине) без перчаток происходит дубление и сморщивание кожи рук. Действие его на ткани вызывает необратимый процесс. Хранение формалина на свету, а также в холодном помещении приводит к полимеризации его, образуется параформальдегид (параформ), который выпадает на дно сосуда (бутыли) в виде плотного белого осадка или хлопьев, которые плавают в жидкости и придают ей цвет молока.

Для растворения осадка (или восстановления) формалин нагревают до 80—85 °C со щелочами. На 100 мл такого формалина (с осадком) берут 130 мл воды и 20 мл нормального раствора едкого кали (56 г КОН на 1л воды). В результате формалин становится прозрачным. Иногда для просветления формалина бывает достаточно лишь подогреть его. Подогревают формалин в вытяжном шкафу или на открытом воздухе.

Действие формалина на ткани зависит от концентрации его и продолжительности фиксации. Если растворы концентрированные, быстро образуется поверхностный слой коагулированного белка и фиксация замедляется, слабые растворы легче проникают в ткань, но действуют медленнее.

Лучшими фиксирующими свойствами обладает 10%-ный раствор нейтрального формалина.

Последовательность изготовления патологоанатомических препаратов. Отбор материала и подготовка его к фиксации. Для приготовления препарата берут такие участки органов и тканей, которые содержат не только пораженные, но и здоровые ткани (для сравнения). Материал для приготовления препаратов берут вскоре после гибели или убоя животного, так как чем дольше лежит труп, тем хуже сохраняется картина патологического процесса (особенно быстро изменяется цвет тканей), тем труднее восстановить естественный цвет тканей.

Вначале проводят предварительную обработку. Она заключается в том, чтобы удалить все ненужные для демонстрации того или иного процесса ткани. Различные загрязнения, обрывки тканей, сгустки крови удаляют до фиксации, поскольку после нее придать соответствующую форму препарату или снять загрязнение и кровь практически невозможно, не нарушая его внешнего вида. Иногда препарат на несколько часов (4—8) помещают в фиксирующую жидкость, а затем проводят его соответствующую обработку: снимают загрязнения, срезают обрывки тканей, удаляют жир и др.

Толщина препарата не должна превышать 3—4 см, так как фиксирующая жидкость медленно проникает в глубь тканей. Если препараты по какой-либо причине нельзя сделать требуемой толщины, то до погружения их в жидкость делают (острым ножом с противоположной для показа стороны) надрезы, в которые кладут гигроскопическую вату, смоченную фиксирующей жидкостью. Фиксирующую жидкость в толщу препарата можно вводить шприцем, прокалывая его во многих местах. Если фиксируют целиком орган или труп мелкого животного, фиксирующую жидкость вводят в крупные кровеносные сосуды или другие естественные каналы под давлением. Кроме того, удаляют внутренние органы через разрез брюшной стенки; последнюю аккуратно зашивают (или кишечник удаляют через тазовую полость и прямую кишку).

Ткани, обладающие способностью быстро сморщиваться, перед фиксацией растягивают на каком-либо твердом предмете (на пробковой пластинке, картоне, тонкой доске) и вместе с ним помещают в фиксирующую жидкость. Отрезки кишечника (слизистой оболочкой вверх) также фиксируют, укрепив на кусочке картона или пробковой пластинке. В тех случаях, когда нужно сохранить целостность и толщину полостного органа, фиксирующую жидкость наливают в его полость, а затем заполняют гигроскопической ватой или выворачивают (если есть показания) слизистой оболочкой наружу, а полость заполняют гигроскопической ватой или другим гигроскопическим материалом (хлопчато-бумажной материей), придав ему соответствующий внешний вид. Плотные трубчатые органы (трахея, бронхи, гортань) фиксируют в раскрытом состоянии. Для этого вставляют распорки (стеклянные трубочки или деревянные палочки) в местах их разреза или разъединения. Распорки вставляют так, чтобы они не заслоняли измененных участков. Под сердечные клапаны (митральный, трехстворчатый и полулунные в аорте и легочной артерии) кладут кусочки гигроскопической ваты, смоченной фиксирующей жидкостью.

Фиксирование. Подготовленный препарат фиксируют. Для этого на дно посуды (избегать металлической), в которой будет фиксироваться препарат, кладут слой гигроскопической ваты, смоченной фиксирующей жидкостью. На нее помещают препарат, придают ему соответствующую форму и заливают жидкостью. Лучшими считают жидкости Кайзерлинга и Мельникова-Разведенкова (раствор I). Если одновременно фиксируют несколько препаратов, то каждый из них аккуратно прокладывают ватой (также смоченной фиксирующей жидкостью). Это делают для того, чтобы препараты не деформировались.

Объем фиксирующей жидкости должен в несколько раз превышать объем фиксируемого материала. Продолжительность фиксации зависит от размеров органа или ткани и определяется опытным путем. Стенки полостных органов (желудок, кишечник, мочевой пузырь и др.) фиксируют 1—2 сут, паренхиматозные органы (сердце, селезенка, почки, легкие и др.) — 1—2 нед и дольше.

Критерием того, что материал профилировался, является его уплотнение, равномерное окрашивание с поверхности и на разрезе в грязно-серый или буроватый цвет. Передерживать препараты в фиксирующей жидкости не рекомендуется, так как формалин разрушает гемоглобин и способность органа восстанавливать естественную окраску утрачивается.

Восстановление цвета препарата. Профилированный материал переносят в этиловый спирт концентрацией не ниже 80—90 % (спирт-сырец непригоден). Небольшие органы или ткани (или кусочки крупных органов) полностью погружают в спирт, крупные органы, чтобы не расходовать много спирта, обкладывают ватой, обильно смоченной спиртом. Посуду, в которой восстанавливают препарат, плотно закрывают.

В 1895 г. Н. Ф. Мельников-Разведенков установил, что метгемоглобин, образующийся при фиксации препарата и придающий органу или ткани грязно-серый цвет, переводится спиртом в стойкий катгемоглобин (нейтральный гематин), имеющий цвет оксигемоглобина и восстанавливающий естественную окраску органа или ткани.

Иногда естественный цвет восстанавливается очень быстро, в течение нескольких минут. Однако, чтобы спирт проник глубже в ткани, препарат выдерживают в спирте в течение 12 ч. Можно вначале погрузить препарат в спирт, уже бывший в употреблении, а затем на 1—2 ч в свежий. Если препарат достаточно полно восстановил естественный цвет, процесс нужно приостановить. При передержке в спирте препарат обесцвечивается.

В литературе есть прописи, в которых спирт не является необходимой составной частью для восстановления цвета. Естественная окраска органа или ткани сохраняется, если к раствору I прибавить хлоралгидрат. Пример такой прописи:

Раствор I (фиксирующий и восстанавливающий цвет):

карловарская соль (искусственная)…………………………………….. 50 г

хлоралгидрат (концентрированный водный раствор)…………… 50 мл

Раствор II (консервирующий):

уксуснокислый калий (или натрий)……………………………………. 300 г

Однако эта смесь (пропись) менее эффективна по сравнению с прописями, содержащими спирт, и используется значительно реже.

Консервирование (пропитывание препаратов глицериновой смесью). После восстановления цвета органы или ткани переносят в раствор III для консервирования и длительного хранения. Препарат опускают в стеклянную банку со смесью и, чтобы он не всплывал, покрывают ватой или тканью. Через 2—3 нед препарат опускается на дно. Хранят препараты в этих же смесях. При длительном хранении препаратов глицериновая смесь мутнеет в результате перехода красящих веществ из ткани в глицерин и может выпадать осадок. Причинами этого могут быть плохая первичная фиксация, несоблюдение сроков фиксации, объемных пропорций, содержание в препарате повышенного количества пигмента, неправильное хранение (перепад температур) и др. В таких случаях препарат заделывают заново. Для удаления осадков и пигмента его промывают в воде и на 30—60 мин помещают в жидкость следующего состава: 1000 мл воды, 30 мл концентрированной химически чистой соляной кислоты и 10 мл азотной кислоты. Затем такое же время промывают в воде, выдерживают в 0,5%-ном растворе хлорамина, переносят в 2%-ный раствор хлорной извести, опять промывают водой (желательно проточной) и заливают свежей смесью глицерина.

Заключение препарата в стеклянную банку (подготовка посуды и монтаж влажных препаратов). Для хранения влажных патологоанатомических препаратов чаще используют прямоугольные стеклянные банки. Можно употреблять и цилиндрические сосуды, редко — банки домашнего обихода (консервная посуда). Посуда, в которой делают препараты для музея, должна быть прозрачной, не искажать цвет и форму препарата и герметически закрываться крышкой. Банки для хранения препаратов готовят заранее. Их тщательно моют при помощи щетки водой с мылом. Подбирают к ним и также тщательно моют стеклянные крышки (их вырезают из стекла чуть больше периметра отверстия банки). Перед приклеиванием крышки края банки обезжиривают спиртом или авиационным бензином и обмазывают менделеевской замазкой (лучше окунуть края банки в расплавленную замазку). Затем в банку наливают немного глицериновой смеси (раствор III) и опускают смонтированный (на стеклянной пластинке или без нее) препарат. Стеклянную пластинку обычно вырезают по ширине банки, а препарат к ней прикрепляют белыми нитками вплотную. Заливают препарат смесью, не доводя до краев на 3—4 см. Туда же опускают кусок ватмана или другой плотной белой бумаги, на которой тушью или графитным карандашом написан код препарата. В книге записей под этим номером-шифром обозначают все данные о препарате: откуда он поступил, когда, вид животного, чем болело и др. Затем нагревают на пламени горелки (спиртовой или газовой) крышку и кладут ее на ребра банки, на которой предварительно была нанесена менделеевская замазка. Последняя плавится, и крышка плотно прилегает к банке. Можно крышкуне нагревать, а поставить на нее горячий тяжелый предмет (например, утюг). Когда крышка остынет и замазка затвердеет, края крышки еще раз обмазывают менделеевской замазкой и покрывают черной эмалью или черным лаком. В верхнем углу банки обычно наклеивают этикетку с указанием органа и патологоанатомического процесса.

В состав менделеевской замазки входят:

мумия просушенная (или прокаленная охра)…………….200 г

льняное (подсолнечное) масло……………………………………… 5 мл

Готовят ее следующим обравом. Сначала в водяной бане расплавляют пчелиный воск, затем добавляют канифоль, массу перемешивают, добавляют мумию (охру), размешивают и добавляют масло. Смесь варят до прекращения пенообразования (примерно 2 ч).

Музейную посуду приобретают по линии Зооветснаба или в зоомагазинах. Если специальной посуды нет, ее можно приготовить из органического стекла. Техника изготовления описана в соответствующих руководствах.

Изготовление сухих препаратов

Тонкостенные органы (чаще полостные: кишечник, желудок, пищевод и др.) можно сохранять в сухом виде (метод Г. В. Шора). Вначале эти органы обрабатывают так же, как и при влажном способе хранения. Фиксируют, восстанавливают цвет, переносят в консервирующую жидкость (раствор III) и хранят не более двух недель. Затем подсушивают на воздухе во взвешенном состоянии (излишки влаги удаляют гигроскопической ватой или хлопчатобумажной материей). На поверхность сухого препарата наносят тонким слоем расплавленный агар и дают остыть. Из органического или обычного стекла делают камеру по размеру органа, края ее тщательно заделывают менделеевской замазкой. Чтобы не конденсировалась влага, помещают в уголок камеры на ватке жженую магнезию.

Патологоанатомические препараты из органов и тканей делают в виде пластинок (пластинчатый метод по Талалаеву) и заключают в желатину или агар-агар. Используя этот метод, особенно хорошие препараты получают из кожи, сальника, сосудов. Из консервирующей жидкости берут орган и вырезают пластинку толщиной 1— 1,5 см. Подсушивают на воздухе. Из стекла (органического или обычного) готовят коробочки высотой до 2 см с таким расчетом, чтобы в них помещалась вырезанная пластинка из органа. В эту коробочку (форму) наливают расплавленный желатин или агар-агар, сразу кладут пластинку из органа и плотно прижимают ее к стеклу дна коробочки. Остывая, агар-агар или желатин сжимаются, поэтому в камеру по мере их остывания доливают эти реактивы. Полное уплотнение среды происходит через 24—36 ч, что зависит от температуры и влажности окружающей среды. Для изготовления коробочек лучше всего пользоваться фотографическими пластинками (они имеют стандартные размеры различной величины и приготовлены из высококачественного стекла). Из них же вырезают и боковые пластинки. Края и крышки склеивают менделеевской замазкой или техническим клеем.

Приготовление желатина. В 500 мл дистиллированной воды помещают 180 г желатина, дают ему набухнуть в течение 2—3 дней, затем нагревают до расплавления. К раствору последовательно добавляют 800 мл глицерина, 350 мл насыщенного при нагревании раствора уксуснокислого калия или натрия и расплавленной химически чистой карболовой кислоты из расчета 1:500. Кипятят в водяной бане и фильтруют через марлю, прослоенную гигроскопической ватой.

Приготовление агар-агара. К 500 мл дистиллированной воды добавляют 15 г мелко нарезанного агар-агара, дают набухнуть 2—3 дня и нагревают до полного растворения. К раствору добавляют 90 г 50%-ного водного раствора уксуснокислого калия или натрия, 200 мл глицерина и расплавленной химически чистой карболовой кислоты из расчета 1: 500. Фильтруют так же, как и желатин.

В специальной литературе описаны и другие методы консервирования и хранения препаратов. Они имеют меньшее практическое применение.

Название книги — Вскрытие и паталогическая диагностика болезней животных

Источник